國表山压学花 dical Universi 省级精品课程申报 1 2 图1-1三类吸量管简图 1、2刻度吸量管3奥氏吸量管4移液管 【吸量管的使用】 (1)选用原则准确量取整数量液体，应选用奥氏吸量管。量取大体积时要用移 液管。量取任意体积的液体时，应选用取液量最接近的吸量管。如欲取0.15ml 液体，应选用0.2mL的刻度吸量管。同一定量试验中，如欲加同种试剂于不同 管中，并且取量不同时，应选择一支与最大取液量接近的刻度吸量管。如各试 管应加的试剂量为0.30、0.50、0.70、0.90mL时，应选用一支1.0mL刻度吸量 管。 (2)吸量管的使用 ①执管：将中指和拇指拿住吸量管上口以食指控制流速：刻度数字应朝向操作 者。 ②取液：把吸量管插入液体内（切忌悬空，以免液体吸入洗耳球内），用洗耳 球吸取液体至所取液量的刻度上端1-2Cm处，然后迅速用食指按紧吸量管上口， 使管内液体不再流出。 ③调准刻度：将已吸足液体的吸量管提出液面，用滤纸片抹干管尖外壁液体， 然后垂直提起吸量管于供器内口（管尖悬离供器内液面）。用食指控制液流至所 需刻度，此时液体凹面、视线和刻度应在同一水平面上，并立即按紧吸量管上 口。 ④放液：放松食指，让液体自然流入受器内，（如移液管标有“吹”字，则应
国表花 省级精品课程申报 将管口残余液滴吹入受器内)此时，管尖应接触受器内壁，但不应插入受器内的 原有液体之中，以免污染吸量管及试剂。 ⑤洗涤：吸取血液、尿、组织样品及粘稠试剂的吸量管，用后应及时用自来 水冲洗干净。如果吸取一般试剂的吸量管可不必马上冲洗，待实验完毕后，用 自来水冲洗干净。晾干水分，再浸泡于铬酸洗液中，数小时后，再用流水冲净， 最后用蒸馏水冲洗。晾干备用。 图1-2放液体时的姿势 2.微量移液器 微量移液器在生化实验中大量地使用，它们主要用于多次重复的快速定量移 液，可以只用一只手操作，十分方便。 移液器可分为二种：一种是固定容量的，常用的有10uL、100L和1000uL 等多种规格。另一种是可调容量的移液器，常用的有100μL、200μL、500uL和 1000如L等几种。每种移液器都有其专用的聚丙烯塑料吸头，吸头通常是一次性 使用，当然也可以清洗后重复使用，而且此种吸头还可以进行120℃高压灭菌。 ()微量移液器的结构 见图1-3，①液体吸收钮。②体积选取钮。⑧体积显示。④枪头排放钮。⑤枪头 排放器。⑥枪头接嘴。其内部柱塞分2段行程，第1档为吸液，第2档为放液。 期一 图1-3微量移液器的结构
园奉山年学花 edical Universit 省级精品课程申报 按闲 图1-4持移液器的姿势 注：推动按钮内部的活塞分2段行程，第一档为吸液，第二档为放液，手感十 分清楚。 (2)微量移液器的操作 ①调体积选取钮至所需体积值： ②套上枪头，旋紧： ③垂直持握微量移液器用大拇指按至第一档： ④将枪头插入溶液，徐徐松开大拇指，使其复原： ⑤将微量移液器移出液面，必要时可用纱布或滤纸拭去附于枪头表面的液体 (注意：不要接触吸头孔口)： ⑥排放时，重新将大拇指按下，至第一档后，继续按至第二档以排空液体。 注意：移取另一样品时，按枪头排放钮弃掉枪头并更换新枪头。 3.容量瓶及量筒：容量瓶是一个细长颈梨形的平底瓶，具有磨口塞，颈上有 标线，表示在所示温度下（一般为20℃）当液体充满到标线时，液体体积恰好 与瓶下所注明的体积相等。容量瓶有10、25、50、100、200、250、500、1000 2000毫升等规格。 容量瓶是装量型的定量容器，多用作稀释溶液或配制精确试剂。当将液体加 至刻度后须用瓶塞塞好，颠倒混匀数次方可使用。 容量瓶是较精确的定量容器，不得直接加热或烘烤，也不应将盛有溶液的容 量瓶放入冰箱内。当配制溶液需要加热促其溶解时，必须在烧杯中加热溶解， 并待溶液达到室温后，再定量地转入容量瓶内，然后稀释到刻度，并要注意摇 匀
@春山单花 省级精品课程申报 当所量取的液体量要求不十分准确时，可使用量筒，因其较使用吸管或量瓶更 为简便，量筒之底座及筒身是焊接一起的，因而不能量取过热液体，更不能直 接加热，以防炸裂。 3.滴定管：滴定管是供容量分析滴定之用，有带玻塞及橡皮管的两种类型 前者用以量酸，后者用以量碱。 滴定管有刻度较精细的微量滴定管，有1.0、2.0、5.0、10毫升等规格。还 有25、50、100毫升等规格的常量滴定管。使用滴定管应该注意以下事项： ①检查是否清洁干燥，是否漏水，玻塞是否滑润，如有漏水或转动不灵，应 拆下活塞重新涂抹凡士林。涂抹前要将玻塞擦干，用手指沾少量凡士林在活塞 两头各擦一薄层，将活塞插入槽内，然后向同一方向转动活塞，直到从外面看 时，全部透明为止。油涂好后，在活塞的小头的槽上套一橡皮圈，以防活塞滑 脱。 ②使用前必须认出每一格表示多少毫升。先用少量滴定液清洗滴定管23次， 然后方可装液。装液体后，管内如有气泡必须排出。 ③滴定前先应读取起始点。滴定时，左手控制玻塞，右手持瓶，边滴边摇， 密切注意被滴定溶液的颜色变化。 ④装置滴定管时，管身必须与地面垂直。读数时眼睛与溶液月形面下缘在同 水平线上，不要仰头或低头读数。 ⑤如用酸式滴定管装碱性溶液，滴定后应立即洗净，以免活塞粘连 二、一般操作技术 1、混匀法：欲使一化学反应充分进行，必须使反应体系内各种物质迅速地相 互接触，因此除特别规定外，一般都需要将反应物彻底混匀。混匀方式大致有 以下几种，可随使用的器皿的液体容量而选用。 (1)旋转混匀法：手持容器作离心旋转，适用以未盛满液体的试管或小口器 皿，如三角瓶等。 (2)弹指混匀法：左手持试管使之直立，以右手食指轻击试管之下部，使管 内溶液作旋转流动。 (3)倒转混法：适用于有玻璃塞的瓶子，如容量瓶等。 (4)弹动混匀法：以右手大拇指、食指、中指握住试管上部，将试管放平
园本山年学花 省级精品课程申报 于左手掌中弹动。 (5)吸管混匀法：用吸管将溶液反复吸放数次，适用于量少而无沉淀的液体 (6)搅拌混匀法：适应烧杯等大口容器所盛之溶液的混匀，一般在配制混合 试剂时，用玻棒搅拌以助溶，或混匀大量的溶液。 2、保温与加热：为使某一化学反应在一定的温度下进行，常需要保温；为促 进或停止化学反应，有时需要加热。实验过程中要随时监测温度，并及时调节 (1)保温：常用恒温箱或恒温水浴进行，后者的温度较前者稳定。 (2)加热：加热常用两种方法，一是直接把试管、烧杯等器皿在酒精灯、电 炉或煤气火焰上加热：二是在水浴中加热或煮沸，应根据实验的目的而定。 3、过滤：过滤的目的是将沉淀与液体分开，用于收集滤液，收集沉淀或洗涤沉 淀。在生化实验中如用于收集滤液应选用干滤纸，不应将滤纸先弄湿，湿滤纸 将影响滤液的稀释比例。滤纸过滤一般采用平析法（即对折后，再对折）并且使 滤纸上缘与漏斗壁完全吻合，不留缝隙。向漏斗内加液时，要用玻棒引导而且 不应倒入过快，勿使液面超过滤纸上缘。较粗的过滤可用脱脂棉或纱布代替滤 纸。有时以离心沉淀法代替过滤法可达到省时、快捷的目的。 三、酸度计的使用方法（以雷磁25型酸度计为例） 酸度计是测定溶液H值的重要精密仪器。实验室常用的是国产雷磁25型酸 度计（最小分度0.1pH)和pS-2型酸度计（最小分度0.02p),可用于p测 定和电动势测定。 1.使用方法 (1)安装电极 仪器配备221型玻璃电极和222型甘汞电极。把玻璃电极的塑料帽夹在电极 夹的夹子上，插头插在插孔内。把某汞电极的金属帽夹在电极夹的另一夹子上， 由于它具有金属的帽子，可直接与仪器内部形成回路。两个电极的高度，可利 用电极夹上的支头螺丝调节。 (2)校正 ①首先，将“p-mv”开关拨到“pH”位置。然后，打开电源开关，指示灯 亮后，应预热5分钟。最好预热时间在半小时以上，以使零点有较好的稳定性